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奧林巴斯CKX53倒置熒光顯微鏡觀察干細胞貼壁情況
編輯 :

北京長恒榮創科技

時間 : 2025-06-07 10:38 瀏覽量 : 1

奧林巴斯CKX53倒置熒光顯微鏡觀察干細胞貼壁情況的應用解析

一、CKX53顯微鏡在干細胞貼壁觀察中的核心優勢

  1. 倒置設計適配培養容器
    CKX53的倒置光路允許直接觀察培養皿、多孔板或培養瓶中的干細胞,無需轉移樣本,避免污染風險。其長工作距離物鏡(如UPLSAPO 10×/0.40)可覆蓋培養容器底部,確保貼壁細胞全視野成像。

  2. 明場與相差觀察的互補性

    • 明場模式:快速定位培養區域,觀察細胞密度、形態輪廓及培養基狀態(如氣泡、污染)。

    • 相差模式(PH系列物鏡):增強細胞與背景對比度,清晰顯示干細胞貼壁后的偽足延伸、細胞間連接等微結構,適合觀察未染色的活細胞。

  3. 熒光觀察能力
    通過外接熒光模塊(如U-FGFP/U-FRFP等濾光片組),可標記干細胞特異性蛋白(如Oct4-GFP)或細胞骨架(如F-actin-RFP),實現貼壁細胞的分子水平成像。

二、干細胞貼壁觀察的關鍵參數與優化方法

  1. 物鏡選擇與分辨率


    物鏡型號數值孔徑(NA)分辨率(μm)適用場景
    UPLSAPO 10×0.40~0.8全視野掃描、細胞密度評估
    UPLSAPO 20×0.75~0.4偽足動態、細胞間相互作用觀察
    UPLSAPO 40×0.95~0.2亞細胞結構(如核形態)分析


    建議:初始觀察使用10×物鏡快速定位,細節分析切換至20×或40×物鏡。

  2. 光源與照明優化

    • 明場/相差:使用內置鹵素燈或LED光源,調節光強至細胞輪廓清晰且無光暈。

    • 熒光:選擇高靈敏度LED光源(如U-HGLGPS),避免汞燈的強光毒性對活細胞的影響。

  3. 熒光標記策略

    • 活細胞標記:使用非侵入性染料(如Calcein-AM標記存活細胞,PI標記死亡細胞)。

    • 特異性標記:通過慢病毒轉染表達熒光蛋白(如Oct4-GFP),或免疫熒光染色(如抗SSEA-4抗體+Alexa Fluor 488)。

三、干細胞貼壁觀察的實驗流程與注意事項

  1. 樣本制備

    • 培養皿預處理:使用多聚賴氨酸或基質膠包被,促進干細胞貼壁。

    • 接種密度:建議5×103~1×10? cells/cm2,避免過度擁擠。

    • 觀察時間點:接種后24小時(初始貼壁)、48小時(細胞鋪展)、72小時(克隆形成)。

  2. 觀察步驟

    • 明場定位:10×物鏡快速掃描培養區域,記錄細胞密度與形態。

    • 相差成像:切換至20×物鏡,觀察細胞偽足、克隆邊緣形態。

    • 熒光檢測:若標記熒光蛋白,使用對應濾光片組(如GFP激發波長470-495 nm,發射波長510-550 nm)。

  3. 數據分析

    • 貼壁率計算:通過ImageJ等軟件統計貼壁細胞數量與接種總數比值。

    • 形態學評分:根據細胞鋪展面積、偽足數量等指標評估貼壁質量。

    • 熒光定量:分析熒光強度(如Oct4-GFP表達量)與細胞分化狀態的相關性。

四、常見問題與解決方案


問題可能原因解決方案
細胞貼壁不均勻培養基成分或包被不足優化培養基配方,增加基質膠濃度
熒光信號弱染料濃度不足或激發光強度低調整染料濃度,更換高功率LED光源
相差圖像背景模糊物鏡與培養皿間距不當調節相差環或使用長工作距離物鏡
活細胞觀察時死亡率高光源光毒性或培養環境不穩定縮短熒光曝光時間,維持CO?濃度


五、CKX53與其他設備的對比與選型建議

  1. 與正置顯微鏡對比

    • 優勢:倒置設計避免樣本轉移,適合長期活細胞觀察。

    • 劣勢:高倍物鏡(如60×/1.40油鏡)需配合特殊培養皿(如玻璃底皿)。

  2. 與共聚焦顯微鏡對比

    • 優勢:CKX53成本低、操作簡單,適合常規貼壁觀察。

    • 劣勢:共聚焦顯微鏡可實現三維成像,但設備昂貴且操作復雜。

  3. 選型建議

    • 基礎研究:CKX53+相差物鏡+單通道熒光模塊即可滿足需求。

    • 高端需求:若需多標記共定位分析,可升級至三通道熒光模塊(如U-FGFP/U-FRFP/U-F594)。

六、總結

奧林巴斯CKX53倒置熒光顯微鏡通過明場、相差與熒光模式的靈活切換,可高效評估干細胞貼壁情況。其長工作距離物鏡與低光毒性光源設計,尤其適合活細胞長期觀察。結合特異性熒光標記與定量分析,可為干細胞培養質量監控提供可靠數據支持。


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